Gronkowiec złocisty – to był pierwszy trop na który wpadłem 3.5 roku temu robiąc gigantyczną ilość kompleksowych badań sprawdzających 'co mi jest’. Ogólnie miałem sporo problemów zdrowotnych w życiu także moje doświadczenie nie tylko polega/polegało na łykaniu przeróżnych suplementów czy piciu ziół, ale i również z infekcji, które przeżyłem i sobie poradziłem. Z gronkiem dałem sobie radę nadzwyczaj szybko, ale o tym na samym końcu posta(jak Cie to tak bardzo interesuje po prostu przewiń na dół a resztę doczytaj kiedy indziej. Co badania mówią na temat gronka?w końcu jest to bakteria która często zdarza się być aktywna w kale podczas badania/diagnozowania SIBO(przerostu bakterii w jelicie cienkim). Właśnie do takich osób dedykuje tego posta wypunktowywując środki, które są efektywne w walce z gronkowcem złocistym i są dodatkowym wsparciem w walce z dysbiozą. Post jak zwykle na 'spontanie’ gdyż miałem w głowie ze 150 innych tematów a że zapytała o niego pewna mama dziecka autystycznego a 2 inne mają go w badaniu CSA(badanie kału) no to cóż…jedziemy!
Informacje dodatkowe:
Co działa na tą bakterię z naturalnych rzeczy:
W moim przypadku skuteczne okazało się mleczko 'ecobutela’ do spożywania wew. oraz inhalacje z olejku z liścia drzewa herbacianego wraz z solą bromowo-jodową(był to gronkowiec znaleziony w wymazie z gardła i nosa).
Post wydał Ci się wartościowy?a może po prostu mnie lubisz ;)?podziel się nim na Facebooku i go udostępnij!
Polub tego bloga na FB, gdzie znajdziesz też dodatkowe newsy, których tutaj nie publikuje https://www.facebook.com/zdrowiebeztajemnic
Obserwuj mnie na instagramie www.instagram.com/premyslaw84
Głosuj i wybieraj kolejne tematy – prawa strona bloga – zakładka „Ankieta”
Literatura
⇧1 | pl.wikipedia.org/wiki/Leki_przeciwp%C5%82ytkowe |
---|---|
⇧2 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21265599 |
⇧3 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9577433 |
⇧4 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14476345 |
⇧5 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24586149 |
⇧6 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11531949 |
⇧7 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24468745 |
⇧8 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17878742 |
⇧9 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26828772 |
⇧10 | google.pl/url?sa=t&rct=j&q=&esrc=s&source=web&cd=2&cad=rja&uact=8&ved=0ahUKEwiNqKvt5cvRAhVBXSwKHYaPB78QFgglMAE&url=http%3A%2F%2Fbiotechnologia.pl%2Fkosmetologia%2Fartykuly%2Foczar-wirginijski%2C10349.html%3Fmobile_view%3Dtrue&usg=AFQjCNFU42SCNVK_ILC27KqDA_dBq-3atQ&sig2=PdPLPcf4QMjEszmW21Jj6Q |
⇧11 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22372149 |
⇧12 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27314764 |
⇧13 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22046374 |
⇧14 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21182923 |
⇧15 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15588686 |
⇧16 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15777988 |
⇧17 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17374894 |
⇧18 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20514796 |
⇧19 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24583152 |
⇧20 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16880637 |
⇧21 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22085765 |
⇧22 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10993226 |
⇧23 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21090258 |
⇧24 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22807321 |
⇧25 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17511150 |
⇧26 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25477905 |
⇧27 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23509865 |
⇧28 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22823343 |
⇧29 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21298838 |
⇧30 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19146534 |
⇧31 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27642597 |
⇧32 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12451978 |
⇧33 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27793096 |
⇧34 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21535608 |
⇧35 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19948852 |
⇧36 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/4633430 |
⇧37 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25307624 |
⇧38 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19107860 |
⇧39 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19844590 |
⇧40 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24455713 |
⇧41 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18277535 |
⇧42 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15561190 |
⇧43 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1603413 |
⇧44 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12842327 |
⇧45 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27103062 |
⇧46 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16379555 |
⇧47 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15652580 |
⇧48 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16410969 |
⇧49 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17391908 |
⇧50 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26349515 |
⇧51 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23460962 |
⇧52 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21782012 |
⇧53 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22551812 |
⇧54 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19120622 |
⇧55 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20971925 |
⇧56 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20639367 |
⇧57 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19580455 |
⇧58 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20015563 |
⇧59 | luskiewnik.strefa.pl/farmakologia/origanum.html |
⇧60 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15621609 |
⇧61 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17960105 |
⇧62 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20402509 |
⇧63 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9637507 |
⇧64 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21716926 |
⇧65 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21380804 |
⇧66 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16277395 |
⇧67 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17951038 |
⇧68 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27345357 |
⇧69 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16161063 |
⇧70 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25395852 |
⇧71 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20461627 |
⇧72 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17578409 |
⇧73 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16108521 |
⇧74 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18472083 |
⇧75 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16226414 |
⇧76 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11446458 |
⇧77 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15315265 |
⇧78 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10438227 |
⇧79 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22079533 |
⇧80 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22942699 |
⇧81 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22382468 |
⇧82 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23469049 |
⇧83 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24947608 |
⇧84 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24987433 |
⇧85 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25731981 |
⇧86 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21532323 |
⇧87 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/3900022 |
⇧88 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20645243 |
⇧89 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10744627 |
⇧90 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8699926 |
⇧91 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17622578 |
⇧92 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25687923 |
⇧93 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14585852 |
⇧94 | ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1785201/ |
⇧95 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16175202 |
⇧96 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15882206 |
⇧97 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23906229 |
⇧98 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15036473 |
⇧99 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22619924 |
⇧100 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26958825 |
⇧101 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12442307 |
⇧102 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21070517 |
⇧103 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15812867 |
⇧104 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20510328 |
⇧105 | rozanski.li/ |
⇧106 | Marcin Tomas, Wioleta Pietrzak, Renata Nowak: Substancje pochodzenia naturalnego w walce z zakażeniami Helicobacter pylori Postepy Fitoterapii 1/2012, s. 22-27 |
⇧107 | H. Zidane, M. Elmiz, F. Aouinti, A. Tahani, J. Wathelet, M. Sindic and A. Elbachiri Chemical composition and antioxidant activity of essential oil, various organic extracts of Cistus ladanifer and Cistus libanotis growing in Eastern Morocco |
⇧108 | African Journal of BiotechnologyVol. 12(34), pp. 5314-5320, 21 August, 2013 N. Benayad , Z. Mennane R. Charof A. Hakiki M. Mosaddak Antibacterial activity of essential oil and some extracts of Cistus ladaniferus from Oulmes in Morocco J. Mater. Environ. Sci. 4 (6) (2013) 1066-1071 |
⇧109 | D. Boustaa, A. Faraha, Elyoubi-EL Hamsasa, L. EL Mansourib, S.H. Soidroua, J. Benjilalia, Adadi a, H. Grechea, M. Lachkarc, M. Alaoui Mhamdib PHYTOCHEMICAL SCREENING, ANTIDEPRESSANT AND IMMUNOMODULATORY EFFECTS OF AQUEOUS EXTRACT OF CISTUS LADANIFER L. FROM MOROCCO |
⇧110 | International Journal of Phytopharmacology. 4(1), 2013, 12-17. |
⇧111 | Sophia Hatziantoniou, Konstantinos Dimas, Aristidis Georgopoulos, Nektaria Sotiriadou, Costas Demetzos Cytotoxic and antitumor activity of liposome-incorporated sclareol against cancer cell lines and human colon cancer xenografts Pharmacological Research 53 (2006) 80–87 |
⇧112 | Lillian Barrosa, Montserrat Due~nas, Carlos Tiago Alvesc, Sónia Silva, Mariana Henriquesc, Celestino Santos-Buelgab, Isabel C.F.R. Ferreiraa, Antifungal activity and detailed chemical characterization of Cistus ladanifer phenolic extracts Industrial Crops and Products 41 (2013) 41– 45 |
⇧113 | Marijana Skorić, Sladana Todorović, Nevenka Gligorijević, Radmila Janković, Suzana Zivković, Mihailo Ristić, Sinisa Radulović Cytotoxic activity of ethanol extracts of in vitro grown Cistus creticus subsp.creticus L. on human cancer cell lines Industrial Crops and Products 38 (2012) 153-159 |
⇧114 | Nilufer Orhan, Mustafa Aslan, Murat Sukurglu , Didem Deliorman Orhan In vivo and in vitro antidiabetic effect of Cistus laurifolius L. anddetection of major phenolic compounds by UPLC–TOF-MS analysis Journal of Ethnopharmacology 146 (2013) 859–865 |
⇧115 | Esra Kupeli, Erdem Yesilada Flavonoids with anti-inflammatory and antinociceptive activity from Cistus laurifolius L. leaves through bioassay-guided procedures Journal of Ethnopharmacology 112 (2007) 524–530 |
⇧116 | Samir Kumar Sadhu, Emi Okuyama, Haruhiro Fujimoto, Masami Ishibashi, Erdem Yesilada Prostaglandin inhibitory and antioxidant components of Cistus laurifolius, a Turkish medicinal plant Journal of Ethnopharmacology 108 (2006) 371–378 |
⇧117 | Esra Kupeli, Didem Deliorman Orhan, Erdem Yesilada Effect of Cistus laurifolius L. leaf extracts and flavonoids on acetaminophen-induced hepatotoxicity in mice Journal of Ethnopharmacology 103 (2006) 455–460 |
⇧118 | Costas Demetzos, Thalia Anastasaki and Dimitrios Perdetzoglou A Chemometric Interpopulation Study of the Essential Oils of Cistus creticus L. Growing in Crete (Greece) Z. Naturforsch. 57c, 89.94 (2002); |
⇧119 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24455739 |
⇧120 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9916063 |
⇧121 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20021093 |
⇧122 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27534136 |
⇧123 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26657812 |
⇧124 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27540376 |
⇧125 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22303901 |
⇧126 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28066373 |
⇧127 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22417517 |
⇧128 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22615298 |
⇧129 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20685402 |
⇧130 | biotechnologia.pl/biotechnologia/artykuly/kwasy-tejchojowe-nowy-cel-w-antybiotykoterapii,15911 |
⇧131 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22582077 |
⇧132 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27080999 |
⇧133 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25430439 |
⇧134 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25153873 |
⇧135 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17510266 |
⇧136 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27760665 |
⇧137 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27815129 |
⇧138 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15742345 |
⇧139 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14738897 |
⇧140 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16643059 |
⇧141 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7897594 |
⇧142 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25435634 |
⇧143 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27051433 |
⇧144 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21283822 |
⇧145 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23208606 |
⇧146 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26247012 |
⇧147 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21287163 |
⇧148 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25764489 |
⇧149 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12803562 |
⇧150 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25966789 |
⇧151 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25871372 |
⇧152 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26947297 |
⇧153 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27259704 |
⇧154 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25015889 |
⇧155 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25213027 |
⇧156 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26198124 |
⇧157 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24232668 |
⇧158 | pl.wikipedia.org/wiki/Kwas_%CE%B3-linolenowy |
⇧159 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23127649 |
⇧160 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22242149 |
⇧161 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23668380 |
⇧162 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17408071 |
⇧163 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12269401 |
⇧164 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24015099 |
⇧165 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21928713 |
⇧166 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27125055 |
⇧167 | ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26004715 |
Pałeczka ropy błękitnej jest dość popularną bakterią występującą u ludzi z mukowiscydozą (parę zdań o mukowiscydozie wspomniałem już tutaj) powodując bardzo poważne zakażenia, w najgorszym wypadku śmierć(może wywołać sepsę). Najczęstszym miejscem zakażenia się tą bakterią są szpitale. Problem w tym, że obecnie bakteria ta jest już na tyle odporna na antybiotyki, że zabieranie się za nią konwencjonalną chemią na nie wiele się zda, a to między innymi za sprawą nie tylko antybiotykooporności, ale i głównie za sprawą jej błony/membrany(składającej się z białka OprH), która jest znacznie mniej przepuszczalna niż np. otoczka bakterii e.coli. Na dodatek bakteria tworzy specyficzny dla siebie biofilm przez który nie przedostanie się żaden antybiotyk czy komórki układu odpornościowego + na dodatek wytwarza toksyny, które dodatkowo pogłębiają problemy zdrowotne + posiada specjalne enzymy które dezaktywują antybiotyki np. z grupy cefalosporyn. P. aeruginosa ma duże zdolności adaptacyjne, dlatego może wywoływać różne zakażenia, np. dróg oddechowych, moczowych, skóry i tkanek miękkich, ucha, oka, bakteriemie oraz zapalenie wsierdzia. Należy z nią zatem walczyć poprzez zakłócenie komunikacji między bakteryjnej quorum sensing(o której pisałem już tutaj), redukcje jej biofilmu, stosowanie substancji/ziół które bezpośrednio oddziałują na bakterie-niszcząc ją oraz wzmacniać odpowiedź komórkową układu odpornościowego, aby wspomóc suplementy/zioła w eliminacji bakterii jak i nie dopuszczeniu do ponownego rozrostu liczebności bakterii.
Kilka słów o toksynie, którą wytwarza pałeczka ropy błękitnej:
Pyocyanin – toksyna którą wytwarza pałeczka ropy błekitnej, pozwala funkcjonować tej bakterii w płucach ludzi z mukowiscydozą i jest często u nich wykrywana. Pyocyanin zakłóca funkcję nabłonka rzęskowego układu oddechowego przez co jest problem z wydalaniem wydzieliny. Dodatkowo powoduje śmierć neutrofili, wytwarzanie się immunoglobuliny oraz limfocytów B jak i także cytokiny zapalnej IL-8 i CCL5 co maksymalnie osłabia układ odpornościowy płuc. W badaniach wykazuje właściwości grzybobójcze przez co jest bakteria dominującą wśród mikroorganizmów występujących w płócach osób z mukowiscydozą. Dodatkowo zaburza koncentracje ATP(od którego zależy cAMP) co powoduje uszkodzenia kanału CFTR(pisałem już o nim więcej tutaj).
Odnośnie protokołu leczniczego:
Przyznaje się, że nie posegregowałem wszystkiego według założeń które wyżej wymieniłem. To zadanie zostawię Tobie bo nie sądzę, że będziesz w stanie nawet połowy z tych preparatów po prostu dostać. Jeśli miałbym coś podpowiedzieć wybrałbym ze 3 preparaty stymulujące układ odpornościowy, 2 na biofilm bakteryjny, 2 na zahamowanie komunikacji quorum sensing i 3 bezpośrednio niszczące samą bakterie(wśród wszystkich tych preparatów dobrze by było uwzględnić takowe które pokryją ze 2 z w/w aspektów + blokowanie wytwarzania toksyny przez omawianą bakterię). Bez względu jaka to jest bakteria polecam zmianę produktów w najgorszym wypadku co 4 tygodnie (lepiej nawet częściej) w celu nie dopuszczenia do uodpornienia się bakterii na jakikolwiek związek.
Żurawina – wykazuje właściwości hamujące quorum sensing pałeczki ropy błękitnej, hamuje wirulencję i tworzenie biofilmu jak i jej rozprzestrzenianie się.
Delfinidyna – związek z gupy antycyjanidów, w badaniach wykazuje zdecydowanie lepszą zdolność do blokady komunikacji quorum niż antybiotyk ampicilina czy też streptomycyna – występuje w kwiecie malwy różowej(Alcea rosea), w owocu borówki(Vaccinium myrtillus), w Ketmi – Hibiscus sabdariffa – kwiat i Ślazie dzikim – Malva sylvestris kwiat.
Sanguinello – pomarańcza krwista(odmiana włoska) – wykazuje dobre działanie antybakteryjne(zwłaszcza olejek) przeciwko nie tylko pałeczce ropy błękitnej, ale
i również przeciwko gronkowcowi złocistemu czy też vs L. monocytogenes (Listeria monocytogenes).
Glycyrrhiza glabra(Lukrecja gladka) – wykazuje bardzo dobre właściwości antybakteryjne(chodzi o glycyrrhizic acid w niej zawarty) vs pałeczka ropy błękitnej,
wyższe niż antybiotyk Amikacin.
Imbir oraz Mięta pieprzowa – także wykazują dobre działanie(z badania z tego co powyżej uwzględniającego Lukrecję)
Ekstrakt z kwiatów E. elatior(Etlingera wyniosła) – wykazuje działanie nie tylko vs Pseudomonas aeruginosa ale także vs Staphylococcus aureus(gronkowiec złocisty(, bacillus subtilis, listeria monocytogenes, e.coli, salmonella. Roślina ta posiada również właściwości antynowotworowe.
Rosa canina l.(Dzika róża) – Związki które wykazują działanie bakteriobójcze wobec pałeczki to isoquercetin i isorhamnetin-3-O-rutinoside. Alkoholowy wyciąg z liści rosa canina l. wykazuje dobre antybakteryjne działanie vs pałeczka ropy błękitnej oraz vs salmonella typhimurium.(działanie mocniejsze od antybiotyków takich jak streptomycyna i ampicillin). Nalewka z tej rośliny nie tylko posiada właściwości niszczące bezpośrednio aktywną bakterie pałeczki r.b. ale i również wykazuje bardzo silne właściwości niszczące biofilm tej bakteri jak i również biofilm bakterii e.coli, leishami (leishmania monocytogenes) czy tez gronkowca złocistego.
Nymphaea tetragona (water lily)/Lilia wodna – w badaniach ekstrakt alkoholowy (na alkoholu 50%) wykazuje zahamowanie ruchliwości(komunikacja quorum) bakterii pałeczki ropy błękitnej o minimum 70%.
Coriandrum sativum L.(Kolendra siewna) – główne składniki linalool, geranyl acetate oraz terpinene wykazuja b.dobre(nalewka alkoholowa oraz olejek) właściwości antybakteryjne vs candida albicans, staphylococcus auereus, e.coli i naturalnie pseudomonas aeruginosa.
Quercus Coccifera’s aqueous(Dąb skalny) – nalewka alkoholowa(najlepiej z kory) wykazała bardzo silne właściwości antybakteryjne vs gronkowiec złocisty oraz pałeczka ropy .błękitnej.
Rhizoma Menispermi/Menisperum dauricum/Korzeń miesięcznika – znacząco polepsza problemy ze stanem zapalnym płuc(niezbędne u ludzi z mukowiscydozą) poprzez tłumienie odpowiedzi zapalnej – NFkappaB, cytokin zapalnych IL-6 i IL-8.
Centella asiatica L.(wąkrotka azjatycka) – blokuje komunikacje quorum C.violaceum. Blokuje produkcje toksyny pyocyjaniny wytwarzanej przez pałeczkę r.b., blokuje komunikacje quorum jak i możliwość tworzenia biofilmu przez pałeczkę.
Phyllanthus amarus(Liściokwiat) – blokuje komunikację quorum sensing bakterii, redukuje jej ruchliwość, wytwarzanie toksyny (pyocyaniny).
Ligusticum mutellina L.(marchwica pospolita) – pseudomonas aeruginosa oraz candida są bakteriami wrażliwymi na alkoholowe nalewki z tego ziela.
Kacip Fatimah Labisa pumila Benth. – Malezyjska roślinka, łodyga, korzeń i liście wykazują dobre działanie vs Micrococcus luteus, Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, Enterobacter aerogenes, Klebsiella pneumonia, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa. Roślinka wykazuje umiarkowane działanie grzybobójcze vs fusarium i Candida.
Papaya – owoc,nasiona i sama pulpa Carica papaya Linn. wykazują właściwości bakteriostatyczne vs Bacillus subtilis, Enterobacter cloacae, Escherichia coli, Salmonella typhi, Staphylococcus aureus, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa i Klebsiella pneumoniae.
Willow herb (Epilobium angustifolium)(Wierzbownica) – w medycynie ludowej używana do leczenia problemów z prostatą, problemów układu pokarmowego oraz w leczeniu skaleczeń/ran. Posiada właściwości bakteriobójcze(hamuje rozrost) takich bakterii jak micrococcus luteus, gronkowiec złocisty, e.coli, pseudomonas aeruginosa. Wykazuje działanie skuteczniejsze od wankomycyny i tetracykliny.
Sophora flavescens(Ku Shen)(Szupin) – zwiększa produkcję interferonu gamma w płócach szczurów zwiększając tym samym odpowiedź komórkową układu odpornościowego.(Th1) przyczyniając się do leczenia infekcji pałeczką ropy błękitnej.
Andrographis – Andrografolid – substancja zawarta w andrografisie wykazuje właściwości hamujące quorum sensing bakterii pałeczki b. oraz formowanie się biofilmu. Więcej o andrographisie pisałem już tutaj.
Kora cynamonowca – cinnamaldehyd oraz olejek z kory cynamonowca wykazują bardzo dobre działanie vs E. coli, Enterobacter aerogenes, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa, Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus i Samonella typhymurium oraz vs grzyby Candida takie jak C. albicans, C. tropicalis, C. glabrata, i C. krusei.
Euphorbia fusiformis Buch.-Ham. ex. D.Don (Euphorbiaceae) (nalewka z korzenia wilczomleczu) – wykazuje dobre właściwości antybakteryjne vs. Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella typhii A i Salmonella typhii B.
Persicaria senegalense (Polygonaceae) – ekstrakty z liścia w dużych dawkach wykazują bardzo wysoki % wyleczenia w infekcjach bakteryjnych/grzybicznych Staphylococcus aureus, Candida albicans, Corynebacterium bovis i Pseudomonas aeruginosa.
Trianthema decandra – nalewka alkoholowa wykazuje porównywalne antybakteryjne działanie z chloramphenicol przeciwko staphylococcus aureus, Escherichia coli, Bacillus subtilis, Pseudomonas aeruginosa and Proteus vulgaris .
Landolphia owerrience – nalewka alkoholowa z korzenia wykazuje b.dobre właściwości antybakteryjne vs. Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Salmonella typhi i Bacillus subtilis.
Olejek z Oregano, kolendry oraz bazylii – bardzo wysoka moc rażenia w eliminacji takich bakterii jak Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Yersinia enterocolitica, Pseudomonas aeruginosa, Lactobacillus plantarum, Aspergillus niger, Geotrichum, i Rhodotorula.
Żeńszeń chiński – w badaniu na szczurach z infekcją płóc zbliżoną/naśladująca mukowiscydozę zastosowano ekstrakt z żeńszenia chińskiego(szczury były zainfekowane pałeczką ropy błękitnej która spowodowała objawy mukowiscydozo-podobne). Żeńszeń zmniejszył poziom komórek tucznych w płucach oraz odpowiedź humoralną układu odpornościowego. W badaniu udowodniono, że szczury karmione żeńszeniem chińskim wykazują oporność na infekcję płócną P.aeruginosa. W innym badaniu wykazano, że żeń-szeń redukuje biofilm Pseudomonas aeruginosy o 39-56%.
Zingerone(związek z Imbiru) – znacząco zmniejsza warstwę biofilmu jakim pałeczka ropy błękitnej się otacza dzięki czemu reszta preparatów wykazuje silniejsze działanie.
Argentine herb Centratherum punctatum – hamuje wirulencję pseudomonas aeruginosa, komunikację quorum i tworzenie się biofilmu.
Rubus parvifolius L.(Jeżyna nuktajska) – olejek z tego ziela efektywnie hamuje wzrost Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Enterococcus faecalis, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumanii, Bacillus cloacae i Klebsiella pneumoniae.
The twigs of Dorstenia mannii Hook(Dorsenia) – nalewka na alkoholu wykazuje b.dobre działanie bakteriobójcze vs pałeczka ropy błękitnej.
A co zwiększa limfocyty Th1(odpowiedź komórkową)?To temat na kolejny artykuł(za kilka tyg.).
Post wydał Ci się wartościowy?a może po prostu mnie lubisz ;)?podziel się nim na Facebooku i go udostępnij!
Polub tego bloga na FB, gdzie znajdziesz też dodatkowe newsy, których tutaj nie publikuje https://www.facebook.com/zdrowiebeztajemnic
Obserwuj mnie na instagramie www.instagram.com/premyslaw84
Głosuj i wybieraj kolejne tematy – prawa strona bloga – zakładka „Ankieta”
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27503003
ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3403998/
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22925726
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23831483
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24086697
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9236860
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11456186
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11694355
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22557045
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27083519
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27539815
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27535797
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27532487
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26399961
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26399901
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26325430
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25829632
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25512685
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25252930
en.wikipedia.org/wiki/Pyocyanin
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24856426
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24169540
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22724452
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21623314
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8412504
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21208973
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20423004
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19152987
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16710900
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17672335
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16159702
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11770205
ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22732887
zakazenia.org.pl/index.php?okno=7&id=1116&art_type=10
W literaturze medycznej opisano, że krętki boreliozy które już się dostały do mózgu przedzierając się przez barierę krew-mózg mogą powodować zaburzenia pamięci. Funkcje poznawcze, problemy z pamięcią i koncentracją są jednymi z najczęściej występujących problemów wynikających z infekcji Borelią. Badania wykazały że pacjenci z boreliozą otrzymali niższe wyniki w testach przetwarzania danych, wizualnej i werbalnej pamięci, koncentracji niż grupa osób zdrowych. W innym badaniu neuroborelioza pogarszała pamięć u dzieci. Badanie na myszach pokazało, że ekspozycja na proteine OspC pochodząca od krętka Borelii uszkadza aksony nerwów w mózgu. W badaniach nad chorobą Alzheimera, uszkodzenie nerwów jest główną przyczyną utraty/osłabienia pamięci. Podwyższone poziomy cytokiny TNF alfa zostały wykryte u pacjentów z Borelią skarżących się na problemy z pamięcią. Antybiotyki były w stanie przynieść pewną poprawę w tym zakresie – mowa o antybiotykach podawanych dożylnie. Pacjentom podawano Rocephin/ceftriaxone zanotowali bardzo dobre polepszenie jeśli chodzi o problemy z pamięcią po 3 miesięcznym okresie podawania antybiotyku niestety jednak z chwilą odstawienia tego rodzaju antybiotyku problemy powróciły. W innym badaniu 18 pacjentów otrzymywało ceftraxone 4 generacji na problemy neuro w Boreliozie, 7 zanotowało całkowite pozbycie się problemów z pamięcią a 8 niezwykle pozytywną poprawę.
No ale nie jest to blog promujący medycynę konwencjonalną a już tym bardziej nie antybiotyki. Co można zatem zrobić, aby poprawić problemy z pamięcią w przebiegu infekcji bakteryjnej(w tym wypadku infekcji krętkiem Boreliozy) i w ogóle przywrócić?
Zajmijmy się może zatem redukcją stanu zapalnego tj.cytokiny odpowiedzialnej za przewlekłe zapalenia,mgłę umysłową, upośledzone funkcje poznawcze, pamięć i syndrom przewlekłego zmęczenia – TNF. W badaniach laboratoryjnych znaleziono kilka substancji obniżających TNF w roślinie która rośnie w chinach i południowej Ameryce – Dan Shen(szałwia czerwona). Cenny jest zwłaszcza korzeń który jest b.dobry przy zwalczaniu Babeszjozy czy też Mykoplazmy(chodzi o zwiększone wytwarzanie NO(tlenku azotu) którego wytwarzanie obie infekcje hamują) oraz podwyższenie/normalizację niedoczynności tarczycy. Należy uważać z dawkowaniem i długościa podawania tej roślinki gdyż zwiększa ona poziomy estrogenów – zaleca się stosowanie nie dłuższe niż 4tyg. Nadmienie że Dan Shen przekracza bariere krew-mózg zatem jest niezwykle cenna w chociażby chorobie Alzheimera.
Inne rośliny hamujące TNF – Bajkalina/Tarczyca bajkalska, Cat’s Claw/vilcacora(dodatkowo pomoże w przypadku infekcji wirusowych).
Następnie przydałoby się zregenerować/odtworzyć zniszczony układ nerwowy:
W badaniach laboratoryjnych oraz testach na zwierzętach odkryto kilka składników ziół które przyczyniają się do naprawy uszkodzonego układu nerwowego. Do takich ziół/grzybów można zaliczyć grzybka Reishi(Ling Zhi) który przyczynia się do zwiększenia wzrostu neuronów w hipokampie – dawkowanie 1-3kaps dziennie na 45min przed posiłkiem. Flawonoidy z rośliny Epimedium(Yin Yang Huo) w badaniach zwiększały poziom neuronów u szczurów. Substancja zwana matrine w korzeniu Sophora (Ku Shen) obniżała deminilizację mózgu oraz uszkodzenia aksonów. Z kolei nalewka na etanolu z Centella asiatica(Ji Xue Cao) zawierająca substancję z grupy terpentenów zwaną kwasem asiatowym powodowała że aksony odbudowywały się w znacznie szybszym tempie niż normalnie. Związek bajijiasu w który bogata jest roślina Morinda officinalis(Bai Ji Tian) nazywana także Indian mullbery zapobiegała uszkodzeniu mózgu przez niedotlenienie oraz odwracała wytwarzanie się amyloidu beta który powoduje problemy poznawcze oraz pamięciowe, zwiększa metabolizm oraz przewodzenie neurotramiterów.
Inne zioła które wykazują działanie odbudowywujące w stosunku do centralnego układu nerwowego: angelica root(Dang Gui)-korzeń arcydzięgiela litwora, red peony root(Chi Shao), Ligusticum root (Chuan iong)-korzeń lukrecji, safflower (Hong Hua) – Krokosz barwierski, nasiona/pestka brzoskwini zwyczajnej(Tao ren), Red marsh earthworms (Di Long).
Dodatki które praktycznie zawsze polecam
Magnez (jabłczan lub cytrynian w ilości 500mg jonów/dziennie w podzielonych dawkach), witaminy z grupy B (b-complex – polecam firme Thorne z iherb.com).
Post wydał Ci się wartościowy?a może po prostu mnie lubisz ;)?podziel się nim na Facebooku i go udostępnij!
Polub tego bloga na FB, gdzie znajdziesz też dodatkowe newsy, których tutaj nie publikuje https://www.facebook.com/zdrowiebeztajemnic
Obserwuj mnie na instagramie www.instagram.com/premyslaw84
Głosuj i wybieraj kolejne tematy – prawa strona bloga – zakładka „Ankieta”
herbs2000.com/herbs/herbs_dan_shen.htm
A Handbook of Chinese Hematology Autorzy Simon Becker str. 49
Sno HN. [Signs and significance of a tick-bite: psychiatric disorders associated with Lyme disease]. [Article in Dutch] Tijdschr Psychiatr. 2012;54(3):235-43. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22422416
Eikeland R, Ljostad U, Mygland A, Herlofson K, Lohaugen GC. European neuroborreliosis: neuropsychological findings 30 months post-treatment. Eur J Neurol. 2012 Mar;19(3):480-7. doi: 10.1111/j.1468-1331.2011.03563.x. Epub 2011 Oct 15. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21999112
Zotter S, Koch J, Schlachter K, Katzensteiner S, Dorninger L, Brunner J, Baumann M, Wolf-Magele A, Schmid H, Ulmer H, Hagspiel S, Rostasy K. Neuropsychological profile of children after an episode of neuroborreliosis. Neuropediatrics. 2013 Dec;44(6):346-53. doi: 10.1055/s-0033-1349724. Epub 2013 Aug 6. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23921969
Tauber SC, Ribes S, Ebert S, Heinz T, Fingerle V, Bunkowski S, Kugelstadt D, Spreer A, Jahn O, Eiffert H, Nau R. Long-term intrathecal infusion of outer surface protein C from Borrelia burgdorferi causes axonal damage. J Neuropathol Exp Neurol. 2011 Sep;70(9):748-57. doi: 10.1097/NEN.0b013e3182289acd. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21865883
Marlatt MW, Lucassen PJ. Neurogenesis and Alzheimer’s disease: Biology and pathophysiology in mice and men. Curr Alzheimer Res. 2010 Mar;7(2):113-25. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19860727
Jacek E, Fallon BA, Chandra A, Crow MK, Wormser GP, Alaedini A. Increased IFN? activity and differential antibody response in patients with a history of Lyme disease and persistent cognitive deficits. J Neuroimmunol. 2013 Feb 15;255(1-2):85-91. doi: 10.1016/j.jneuroim.2012.10.011. Epub 2012 Nov 8. ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3557545/
Fallon BA, Keilp JG, Corbera KM, Petkova E, Britton CB, Dwyer E, Slavov I, Cheng J, Dobkin J, Nelson DR, Sackeim HA. A randomized, placebo-controlled trial of repeated IV antibiotic therapy for Lyme encephalopathy. Neurology. 2008 Mar 25;70(13):992-1003. Epub 2007 Oct 10. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17928580
Logigian EL, Kaplan RF, Steere AC. Successful treatment of Lyme encephalopathy with intravenous ceftriaxone. J Infect Dis. 1999 Aug;180(2):377-83. jid.oxfordjournals.org/content/180/2/377.full
Balducci C, Mancini S, Minniti S, La Vitola P, Zotti M, Sancini G, Mauri M, Cagnotto A, Colombo L, Fiordaliso F, Grigoli E, Salmona M, Snellman A, Haaparanta-Solin M, Forloni G, Masserini M, Re F. Multifunctional liposomes reduce brain ß-amyloid burden and ameliorate memory impairment in Alzheimer’s disease mouse models. J Neurosci. 2014 Oct 15;34(42):14022-31. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0284-14.2014. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25319699
Zhang XD, Xu DZ, Li JH, Wang T, Ge FH, Yang L. [Study on the immunocompetence of polysaccharide extracted from root of Salvia miltiorrhiza]. [Article in Chinese] Zhong Yao Cai. 2012 Jun;35(6):949-52. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23236833
Błach-Olszewska Z, Jatczak B, Rak A, Lorenc M, Gulanowski B, Drobna A, Lamer-Zarawska E. Production of cytokines and stimulation of resistance to viral infection in human leukocytes by Scutellaria baicalensis flavones. J Interferon Cytokine Res. 2008 Sep;28(9):571-81. doi: 10.1089/jir.2008.0125. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18771341
Reis SR, Valente LM, Sampaio AL, Siani AC, Gandini M, Azeredo EL, D’Avila LA, Mazzei JL, Henriques Md, Kubelka CF. Immunomodulating and antiviral activities of Uncaria tomentosa on human monocytes infected with Dengue Virus-2. Int Immunopharmacol. 2008 Mar;8(3):468-76. doi: 10.1016/j.intimp.2007.11.010. Epub 2007 Dec 26. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18279801
Wang SQ, Li XJ, Zhou S, Sun DX, Wang H, Cheng PF, Ma XR, Liu L, Liu JX, Wang FF, Liang YF, Wu JM. Intervention effects of ganoderma lucidum spores on epileptiform discharge hippocampal neurons and expression of neurotrophin-4 and N-cadherin. PLoS One. 2013 Apr 24;8(4):e61687. doi: 10.1371/journal.pone.0061687. Print 2013. ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3634853/
Yao R, Zhang L, Li X, Li L. Effects of Epimedium flavonoids on proliferation and differentiation of neural stem cells in vitro. Neurol Res. 2010 Sep;32(7):736-42. doi: 10.1179/174313209X459183. Epub 2009 Aug 21. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19703337
Kan QC, Lv P, Zhang XJ, Xu YM, Zhang GX, Zhu L. Matrine protects neuro-axon from CNS inflammation-induced injury. Exp Mol Pathol. 2015 Jan 7;98(1):124-130. doi: 10.1016/j.yexmp.2015.01.001. [Epub ahead of print] ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25576296
Soumyanath A, Zhong YP, Gold SA, Yu X, Koop DR, Bourdette D, Gold BG. Centella asiatica accelerates nerve regeneration upon oral administration and contains multiple active fractions increasing neurite elongation in-vitro. J Pharm Pharmacol. 2005 Sep;57(9):1221-9. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16105244
Chen DL, Zhang P, Lin L, Zhang HM, Deng SD, Wu ZQ, Ou S, Liu SH, Wang JY. Protective effects of bajijiasu in a rat model of Aß25?35-induced neurotoxicity. J Ethnopharmacol. 2014 May 28;154(1):206-17. doi: 10.1016/j.jep.2014.04.004. Epub 2014 Apr 14. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24742752